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Coloración y tincion de las celulas, Apuntes de Medicina Preventiva

Tinción de células y coloracion

Tipo: Apuntes

2022/2023

Subido el 04/05/2023

Luisana83
Luisana83 🇻🇪

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METODOS DE COLORACION
El tamaño de la mayoría de las células bacterianas es tal que resultan difíciles de ver con el
microscopio óptico. La principal dificultad es la falta de contraste entre la célula y el medio que la
rodea, y el medio más simple de aumentar el contraste es la utilización de colorantes. Estos
pueden emplearse para distinguir entre tipos diferentes de células es para revelar la presencia de
determinados constituyentes celulares, tales como flagelos, esporas, cápsulas, paredes celulares,
centros de actividad respiratoria, etc.
La mayoría de los colorantes son compuestos orgánicos que tienen alguna afinidad específica por
los materiales celulares. Muchos colorantes utilizados con frecuencia son moléculas cargadas
positivamente (cationes) y se combinación intensidad con los constituyentes celulares cargados
negativamente, tales como los ácidos nucleicos y los polisacáridos ácidos. Ejemplos de colorantes
catiónicos son el azul de metileno, el cristal violeta y la safranina. Otros colorantes son moléculas
cargadas negativamente (aniones) y se combinan con los constituyentes celulares cargados
positivamente, tales como muchas proteínas. Esos colorantes incluyen la eosina, la fucsina ácida
y el rojo Congo. Otro grupo de colorantes son sustancias liposolubles. Los colorantes de este
grupo se combinan con los materiales lipídicos de la célula, usándose a menudo para revelar la
localización de las gotículas o depósitos de grasa. Un ejemplo de colorante liposoluble es el negro
Sudán.
Algunos colorantes teñirán mejor sólo después de que la célula haya sido tratada con otra
sustancia química, que no es un colorante por sí mismo. Esta sustancia se denomina mordiente.
Un mordiente habitual es el ácido tánico. El mordiente se combina con un constituyente celular y
lo altera de modo que ahora sí podrá atacar el colorante.
Método de Gram
La tinción de Gram es probablemente la más conocida; es de tipo diferencialy sirve para
distinguir a los microorganismos por morfología y composición.
Hay que tener en cuenta que se debe hacer la tinción cuando el cultivo está en fase exponencial,
ya que en fase estacionaria (“vejez”) se pueden confundir las gram positivas con las negativas.
Esto ocurre debido a la perdida de capas de peptidoglicano por parte de bacterias gram positivas.
Colorantes
1- Colorante Cristal Violeta:
a. Cristal Violeta 2 g
b. Etanol 95% 20 ml
c. Oxalato de amonio 0,8 g
d. Agua Destilada 100 ml 2-
Solución de Iodo:
a. Ioduro de Potasio 2 g
b. Iodo Metálico 1 g
c. Agua Destilada 100 ml 3-
Solución Decolorante:
a. Acetona 20 ml
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METODOS DE COLORACION

El tamaño de la mayoría de las células bacterianas es tal que resultan difíciles de ver con el microscopio óptico. La principal dificultad es la falta de contraste entre la célula y el medio que la rodea, y el medio más simple de aumentar el contraste es la utilización de colorantes. Estos pueden emplearse para distinguir entre tipos diferentes de células es para revelar la presencia de determinados constituyentes celulares, tales como flagelos, esporas, cápsulas, paredes celulares, centros de actividad respiratoria, etc. La mayoría de los colorantes son compuestos orgánicos que tienen alguna afinidad específica por los materiales celulares. Muchos colorantes utilizados con frecuencia son moléculas cargadas positivamente (cationes) y se combinación intensidad con los constituyentes celulares cargados negativamente, tales como los ácidos nucleicos y los polisacáridos ácidos. Ejemplos de colorantes catiónicos son el azul de metileno, el cristal violeta y la safranina. Otros colorantes son moléculas cargadas negativamente (aniones) y se combinan con los constituyentes celulares cargados positivamente, tales como muchas proteínas. Esos colorantes incluyen la eosina, la fucsina ácida y el rojo Congo. Otro grupo de colorantes son sustancias liposolubles. Los colorantes de este grupo se combinan con los materiales lipídicos de la célula, usándose a menudo para revelar la localización de las gotículas o depósitos de grasa. Un ejemplo de colorante liposoluble es el negro Sudán. Algunos colorantes teñirán mejor sólo después de que la célula haya sido tratada con otra sustancia química, que no es un colorante por sí mismo. Esta sustancia se denomina mordiente. Un mordiente habitual es el ácido tánico. El mordiente se combina con un constituyente celular y lo altera de modo que ahora sí podrá atacar el colorante.

Método de Gram

La tinción de Gram es probablemente la más conocida; es de tipo diferencial y sirve para distinguir a los microorganismos por morfología y composición. Hay que tener en cuenta que se debe hacer la tinción cuando el cultivo está en fase exponencial, ya que en fase estacionaria (“vejez”) se pueden confundir las gram positivas con las negativas. Esto ocurre debido a la perdida de capas de peptidoglicano por parte de bacterias gram positivas. Colorantes 1- Colorante Cristal Violeta: ○ a. Cristal Violeta 2 g ○ b. Etanol 95% 20 ml ○ c. Oxalato de amonio 0,8 g ○ d. Agua Destilada 100 ml 2- Solución de Iodo: ○ a. Ioduro de Potasio 2 g ○ b. Iodo Metálico 1 g ○ c. Agua Destilada 100 ml 3- Solución Decolorante: ○ a. Acetona 20 ml

○ b. Etanol 95º 80 ml 4- Solución Contracolorante: ○ Solución Madre: ○ a. Safranina 2,5 g ○ b. Etanol 95ºC 100 ml TECNICA El proceso de tinción consta de los siguientes pasos:

  1. Con el asa de cultivo se cogen varias cargas (colonias, células bacterianas), y se extienden por el portaobjetos. No se añade agua destilada.
  2. El proceso de fijación se realiza por calor a la llama.
  3. Se añade cristal violeta , recubriendo con este colorante el portaobjetos durante 2 o 3 minutos.
  4. Ahora se añade lugol (yoduro potásico 2% + yodo) durante 1 minuto. El lugol no es un colorante en sí, sino que hace de mordiente. El mordiente se acopla con el colorante y facilita su absorción por parte del microorganismo.
  5. Se lava el portaobjetos con agua destilada. El agua no debe tocar directamente la muestra.
  6. Decolorado con alcohol 96%. Se añade el alcohol gota a gota, y de la muestra saldrán gotas violáceas. Paramos de añadir alcohol cuando salga la primera gota transparente de la muestra.
  7. Se añade el colorante de contraste, la safranina , durante 5 minutos.
  8. Por último, se lava el portaobjetos y se seca. Gram positivas Las siguientes especies son las gram positivas más representativas:

Neisseria gonorrhoeae con la tinción de Gram. Podemos ver que su morfología es de coco, y que suelen agruparse en diplococos

Método Ziehl-Neelsen

La tinción de Ziehl-Neelsen es de tipo diferencial, y sirve para detectar bacterias ácido-alcohol resistentes (BAAR), siendo la más destacada Mycobacterium tuberculosis. Esto es muy útil, sobre todo teniendo en cuenta que M. tuberculosis no puede ser detectada correctamente con la tinción de Gram. Lo que hace diferentes a estas bacterias es la presencia de un polímero (ácidos micólicos) que se une a azúcares, lo que provoca que el conjunto de la pared sea muy impermeable.

Colorantes.

Carbofucsina:  a. Fucsina Básica 0,3 g  b. Etanol 95º 10 ml  c. Solución Fenol 5% 90 ml 2- Alcohol Acido:  a. ClH 3 ml  b. Etanol 95º 100 ml 3- Contracolorante:  a. Azul de Metileno 0,3 g  b. Agua 100 ml

TECNICA

El proceso de tinción consta de los siguientes pasos:

  1. Con el asa de cultivo se cogen varias cargas (colonias, células bacterianas), y se extienden por el portaobjetos. No se añade agua destilada.
  2. Se fija la muestra con calor.
  3. Se añade fucsina fenicada, cubriendo totalmente el portaobjetos durante 3 minutos.
  4. Más tarde, se pasa el mechero varias veces, durante 5 minutos, pero sin permitir que hierva el colorante, ni que se seque, ya que sino el colorante se consume.
  5. El exceso de colorante se quita con agua destilada.
  6. Se añade alcohol-ácido para la decoloración durante 10 minutos a intervalos de 1 minuto y medio.
  7. Ahora se añade el colorante de contraste, el azul de metileno, durante 3 minutos.
  8. Por último, se lava el portaobjetos y se seca al aire Mycobacterium tuberculosis (bacilos rojizos) con la tinción de Ziehl-Neelsen en un nódulo linfático

método de Wirtz-Conklin

La tinción de Wirtz-Conklin se usa para observar bien las endosporas bacterianas. La muestra debe ser obtenida de un cultivo en fase estacionaria. En este caso, para su observación al microscopio hay que usar la lente x100, usando aceite de inmersión. Entra en el grupo de las tinciones selectivas , aunque al añadir un colorante de contraste es técnicamente una tinción diferencial. COLORANTESSolución Verde de MalaquitaVerde de Malaquita 5 gAgua 100 ml2.- Solución de Safranina(ver coloración de Gram).

cuerpos de denominan también gránulos metacromáticos, porque presentan un efecto metacromático, viéndose rojos cuando se tiñen con un colorante azul. En las micrografías electrónicas aparecen como cuerpos extraordinariamente densos a los electrones. Los gránulos deben su comportamiento metacromático a la presencia de grandes cantidades de polifosfato inorgánico que constituyen una fuente de reserva intracelular de fosfato.} COLORANTES Azul de metileno 0,3 g Alcohol Etílico 95º 30 ml Agua Destilada 100 ml TECNICA  Realizar una extensión, fijada con calor

 Una vez fijada la extensión, cubrirla con una solución al 1% de azul de metileno e incubarlo 2 minutos, a temperatura ambiente. Para la incubación utilizaremos un cristalizador Como soporte.  Lavar la extensión con abundante agua destilada, con cuidado de no dirigirla directamente sobre la muestra.

METODO DE WRIGHT

Esta coloración es conocida como policromática debido a que produce varios colores. Es una solución de alcohol metílico de un colorante ácido (eosina) y otro básico (azul de metileno). El alcohol sirve como un fijador del frotis sanguíneo al portaobjetos. El amortiguador, que consiste en una solución tamponada, mantiene el pH del colorante y favorece la mejor absorción por los diferentes componentes celulares.  Realizamos un frotis sanguíneo que dejamos secar.

 Una vez seca la muestra, le colocamos un cubre encima y aceite de inmersión sobre este.